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無標記活細胞成像技術應用于高時空分辨率捕捉蛋白結構變化

瀏覽次數(shù):116 發(fā)布日期:2025-12-3  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負

本文介紹了一項發(fā)表于《Nature Biomedical Engineering》的創(chuàng)新研究,開發(fā)了一種名為中紅外光聲顯微鏡(MiROM)的無標記活細胞成像技術。該技術能夠敏感地檢測蛋白質二級結構變化,特別是在多發(fā)性骨髓瘤治療中,通過監(jiān)測β-折疊結構的形成來評估患者對藥物的反應。傳統(tǒng)方法如流式細胞術或免疫印跡需要熒光標記或大量細胞,且只能提供群體水平的快照信息,而MiROM技術實現(xiàn)了單細胞水平、實時、縱向的評估,僅需少量細胞即可完成。

本研究的核心貢獻者包括Francesca Gasparin、Marlene R. Tietje、Eslam Katab、Aizada Nurdinova、Tao Yuan、Andriy Chmyrov、Nasire Uluc、Dominik Jüstel、Florian Bassermann、Vasilis Ntziachristos和Miguel A. Pleitez。文章標題為“Label-free protein-structure-sensitive live-cell microscopy for patient-specific assessment of myeloma therapy”,于2025年7月14日在《Nature Biomedical Engineering》期刊上在線發(fā)表。

重要發(fā)現(xiàn)
01技術原理與基礎驗證
MiROM技術基于光聲效應原理,通過中紅外激光激發(fā)生物分子振動,并檢測產(chǎn)生的超聲波信號來實現(xiàn)成像。與傳統(tǒng)中紅外光譜不同,MiROM采用正對比機制,即光學吸收越強,超聲波信號越強,從而克服了水吸收導致的靈敏度限制。研究團隊首先在蛋白質溶液體系中驗證了MiROM的特異性,例如血紅蛋白(以α-螺旋為主)和伴刀豆球蛋白A(以β-折疊為主)的光譜顯示,MiROM能夠清晰區(qū)分不同二級結構特征,與標準ATR-FTIR光譜結果一致。

進一步地,團隊通過熱變性實驗展示了MiROM檢測蛋白質構象變化的能力。白蛋白在天然狀態(tài)下顯示α-螺旋特征峰(1654 cm⁻¹),而變性后出現(xiàn)β-折疊峰(1612 cm⁻¹),這證實了MiROM對蛋白質折疊狀態(tài)的敏感性。在活細胞應用中,團隊使用HeLa細胞在D₂O/H₂O混合培養(yǎng)基中進行成像,發(fā)現(xiàn)D₂O比例越高,圖像對比度越強,最高可達純水環(huán)境的3.4倍,且細胞活性在70% D₂O中保持93.8%,證明了技術的生物相容性。

02骨髓瘤治療響應監(jiān)測
在多發(fā)性骨髓瘤模型中,MiROM被用于評估蛋白酶體抑制劑(如bortezomib, BTZ)和免疫調(diào)節(jié)藥物(如lenalidomide, LEN)的治療效果。這些藥物通過抑制泛素-蛋白酶體系統(tǒng),導致錯誤折疊蛋白積累和細胞凋亡。研究團隊在MM1.S細胞系中觀察到,藥物處理后,光譜分析顯示1612 cm⁻¹處出現(xiàn)β-折疊特征峰,表明錯誤折疊蛋白聚集。這一現(xiàn)象在聯(lián)合用藥(LEN/BTZ)或單獨用藥時均被檢測到,且隨時間推移信號增強,而對照組或無相關藥物作用的細胞(如使用doxorubicin)則無此變化。

通過非負矩陣分解(NMF)分析,團隊提取了5個光譜組分,其中組分2(1618 cm⁻¹)和組分4(1666 cm⁻¹)分別對應β-折疊和α-螺旋結構。在治療組中,β-折疊組分顯著增加(96小時后上升174%),而α-螺旋組分下降,進一步驗證了MiROM的定量能力。t-SNE聚類分析顯示,治療后細胞光譜與對照組明顯分離,突出了技術的單細胞分辨率優(yōu)勢。

03患者樣本的臨床應用
在臨床轉化層面,MiROM被應用于9名新診斷骨髓瘤患者的原代CD138+細胞中。結果顯示,敏感患者細胞在LEN/BTZ處理后,β-折疊信號增強,響應細胞比例平均達53%,而對照組僅為20%。對于復發(fā)/難治性患者,MiROM成功預測了藥物抵抗情況:例如,一名對LEN抵抗但對BTZ敏感的患者,檢測到β-折疊形成,與臨床結局一致。這證明了MiROM在個性化治療評估中的潛力,僅需少量細胞即可實現(xiàn)實時監(jiān)測。

創(chuàng)新與亮點
01突破成像難題
MiROM技術解決了傳統(tǒng)光學顯微鏡在蛋白質二級結構檢測中的核心瓶頸。可見光區(qū)技術缺乏特異性,而常規(guī)中紅外光譜受水吸收干擾,需使用超薄路徑或同步輻射光源,易造成細胞損傷。MiROM通過光聲探測機制,將光學吸收轉化為聲信號,實現(xiàn)了在生理條件下對活細胞的無標記成像。其靈敏度在酰胺I區(qū)(1700-1600 cm⁻¹)可達信號變化1%,遠高于拉曼顯微鏡等技術,為蛋白質動態(tài)研究提供了新途徑。

02新技術優(yōu)勢
MiROM的創(chuàng)新性體現(xiàn)在其正對比成像能力上。與負對比的傳統(tǒng)中紅外方法不同,MiROM的信號強度隨吸收增加而提升,避免了光子損失問題。同時,技術結合D₂O培養(yǎng)基優(yōu)化,在保持細胞活性的前提下提升了對比度。此外,MiROM具備高時空分辨率(橫向分辨率約6μm),可進行單細胞縱向追蹤,克服了流式細胞術或免疫印跡所需的大量細胞樣本限制。

總結與展望
本研究開發(fā)的MiROM技術成功實現(xiàn)了無標記、蛋白質結構敏感的活細胞成像,為多發(fā)性骨髓瘤治療評估提供了高效、微創(chuàng)的新方法。通過檢測β-折疊結構作為生物標志物,MiROM能夠在單細胞水平實時監(jiān)測藥物響應,克服了傳統(tǒng)技術的局限性。未來,通過優(yōu)化激光參數(shù)和成像速度,MiROM可進一步提升靈敏度并擴大應用范圍,如用于其他癌癥或神經(jīng)退行性疾病研究。展望中,該技術有望成為臨床標準工具,幫助醫(yī)生快速測試多種藥物組合,優(yōu)化患者特異性治療方案,最終提升治療效果并減少患者痛苦。

論文信息
聲明:本文僅用作學術目的。
Gasparin F, Tietje MR, Katab E, Nurdinova A, Yuan T, Chmyrov A, Uluç N, Jüstel D, Bassermann F, Ntziachristos V, Pleitez MA. Label-free protein-structure-sensitive live-cell microscopy for patient-specific assessment of myeloma therapy. Nat Biomed Eng. 2025 Jul 14

DOI:10.1038/s41551-025-01443-3.

發(fā)布者:羅輯技術(武漢)有限公司
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