PRISM(Profiling of RNA In-situ through Single-round iMaging)是一種新型的高復(fù)用空間RNA成像技術(shù),它通過顏色強度條形碼策略,在傳統(tǒng)熒光顯微鏡下實現(xiàn)單輪成像即可檢測多達64種RNA轉(zhuǎn)錄本。該方法利用滾動圈擴增(RCA)和競爭性雜交原理,將熒光信號的強度分級與多通道光譜結(jié)合,克服了傳統(tǒng)顯微鏡僅能分辨有限通道的瓶頸。PRISM技術(shù)無需復(fù)雜的流體學(xué)設(shè)備,整個工作流程可在一天內(nèi)完成,顯著降低了空間轉(zhuǎn)錄組學(xué)的技術(shù)門檻。研究團隊在多個組織樣本中驗證了PRISM的實用性,包括小鼠胚胎發(fā)育圖譜、人類肝癌微環(huán)境分析以及小鼠腦組織的3D成像,揭示了細胞類型分布、亞細胞RNA定位及腫瘤異質(zhì)性等關(guān)鍵生物學(xué)信息。該技術(shù)的高通量、高分辨率和易用性,為生物醫(yī)學(xué)研究提供了強有力的工具。
本研究的核心貢獻者包括Tianyi Chang、Shihui Zhao、Kunyue Deng、Zhizhao Liao、Mingchuan Tang、Yanxi Zhu、Wuji Han、Chenxi Yu、Wenyi Fan、Mengcheng Jiang、Guanbo Wang、Dongfang Liu、Jirun Peng、Yuhong Pang、Peng Fei、Jianbin Wang、Chunhong Zheng和Yanyi Huang。研究成果以論文“High-plex spatial RNA imaging in one round with conventional microscopes using color-intensity barcodes”的形式,于2025年10月在《Nature Biotechnology》上發(fā)表。
重要發(fā)現(xiàn)
01PRISM技術(shù)原理與工作流程
PRISM技術(shù)的核心在于通過顏色強度條形碼對RNA轉(zhuǎn)錄本進行編碼。每個靶基因的padlock探針包含多個片段,每個片段對應(yīng)一個熒光通道(如Texas Red、Alexa Fluor 488、Cy5、Cy3),并通過混合標(biāo)記與未標(biāo)記成像探針的比例,實現(xiàn)熒光強度的分級量化。這種設(shè)計使得在有限的光譜通道內(nèi)(如3-4個通道),通過強度組合可產(chǎn)生大量可區(qū)分的條形碼。例如,將三個通道分為五級強度(0-4/5),并結(jié)合第四個通道的雙級強度,理論編碼容量可達64種基因。關(guān)鍵創(chuàng)新是半徑向量過濾策略,確保條形碼在顏色空間中的角度分散,避免因擴增產(chǎn)物大小不均導(dǎo)致的信號混淆。
工作流程從padlock探針與靶RNA結(jié)合開始,經(jīng)過連接和滾動圈擴增,產(chǎn)生大量相同的條形碼序列。隨后,通過單輪混合成像探針染色,利用競爭性雜交使每個片段按預(yù)設(shè)比例顯示熒光強度。成像后,信號點被提取并投影到顏色空間,通過高斯擬合或手動邊界劃分進行條形碼解碼。該方法在傳統(tǒng)顯微鏡下即可實現(xiàn),無需多輪反應(yīng),減少了樣本變形和配準(zhǔn)誤差。實驗驗證顯示,PRISM的解碼準(zhǔn)確率超過95%,且對組織自發(fā)熒光有良好魯棒性。
02實驗驗證與多組織應(yīng)用在小鼠胚胎發(fā)育研究中,PRISM生成了E12.5至E14.5階段的3D細胞圖譜,涵蓋了超過425萬個細胞,分為12種主要類型。研究揭示了神經(jīng)系統(tǒng)、呼吸系統(tǒng)、運動系統(tǒng)和消化系統(tǒng)等器官的發(fā)育動態(tài),例如脊髓中Hoxb8、Robo2和Stmn2基因的共表達,以及肢體發(fā)育中Wnt5a+和Tbx5+細胞的空間相關(guān)性。細胞互作分析顯示,肝細胞中94%存在近距離相互作用,表明胚胎期肝小葉結(jié)構(gòu)的早期形成。
在人類肝癌樣本中,PRISM使用31個基因 panel(包括HBV核心蛋白編碼序列),分析了約120萬個細胞,識別出32種細胞類型,如腫瘤細胞、癌癥相關(guān)成纖維細胞(CAFs)和免疫細胞亞型?臻g分析揭示了腫瘤微環(huán)境的異質(zhì)性,例如CAFs形成物理屏障阻礙免疫細胞浸潤,以及B細胞在3D空間中形成淋巴樣網(wǎng)絡(luò)。這些發(fā)現(xiàn)為肝癌免疫治療提供了新見解。
033D成像與亞細胞分析創(chuàng)新與亮點
PRISM技術(shù)的核心創(chuàng)新在于突破了傳統(tǒng)光學(xué)成像的多路復(fù)用限制。常規(guī)熒光顯微鏡受限于光譜重疊,通常只能分辨4-5個通道,而PRISM通過顏色強度分級,將編碼容量提升至64重,無需超分辨率或?qū)S迷O(shè)備。這種“單輪成像”策略避免了多輪標(biāo)記-剝離反應(yīng)帶來的樣本損傷和配準(zhǔn)難題,顯著提高了實驗效率和可重復(fù)性。此外,PRISM采用半徑向量過濾優(yōu)化條形碼區(qū)分度,并通過調(diào)整熒光探針比例適應(yīng)不同光學(xué)系統(tǒng),展現(xiàn)了高度的靈活性和魯棒性。
在生物醫(yī)學(xué)價值方面,PRISM降低了空間轉(zhuǎn)錄組學(xué)的技術(shù)門檻,使普通實驗室也能開展高通量空間RNA分析。它成功應(yīng)用于胚胎發(fā)育、腫瘤微環(huán)境和神經(jīng)科學(xué)等多個領(lǐng)域,提供了細胞互作、亞細胞定位和3D結(jié)構(gòu)的全新見解。例如,在肝癌研究中,PRISM揭示了CAFs的屏障作用和免疫細胞空間異質(zhì)性,為精準(zhǔn)醫(yī)療提供了潛在靶點。技術(shù)開源性進一步促進了廣泛采用,有望推動分子病理學(xué)和細胞圖譜構(gòu)建的普及。
總結(jié)與展望
PRISM技術(shù)通過顏色強度條形碼實現(xiàn)了高效、易用的空間RNA成像,為生物醫(yī)學(xué)研究提供了強大工具。它克服了傳統(tǒng)顯微鏡的通道限制,并在多種組織類型中驗證了其可靠性和廣泛應(yīng)用潛力。未來,PRISM可通過結(jié)合光激活染料或膨脹顯微鏡進一步提升復(fù)用能力和分辨率。雖然目前靈敏度較低(約10%),但通過增加靶基因探針數(shù)量有望改善。隨著技術(shù)優(yōu)化和社區(qū)推廣,PRISM有望成為空間生物學(xué)的基礎(chǔ)技術(shù),推動疾病機制研究和臨床診斷創(chuàng)新。
DOI:10.1038/s41587-025-02883-7.